細胞計數(shù)是細胞培養(yǎng)、藥物篩選、細胞功能實驗的基礎(chǔ)環(huán)節(jié),細胞濃度與活率數(shù)據(jù),直接決定后續(xù)鋪板用量、給藥濃度以及實驗結(jié)論可靠性。
美國DeNovix細胞計數(shù)器簡化了人工計數(shù)流程,減少人為視覺判斷帶來的誤差,但日常實驗中依舊頻繁出現(xiàn)同一樣本多次測量數(shù)值差異較大、與手工計數(shù)結(jié)果偏離等情況,多數(shù)偏差來源于樣本前處理、檢測設(shè)置、樣本加載操作三個層面。
樣本分散程度是造成計數(shù)波動最常見的誘因。貼壁細胞消化操作把控不當,會形成大小不一的細胞團塊,儀器識別算法很難將團聚細胞逐一拆分統(tǒng)計,最終統(tǒng)計數(shù)值低于真實細胞總量。消化終止不及時,胰酶持續(xù)作用損傷細胞膜,細胞活率檢測結(jié)果同步失真。懸浮細胞經(jīng)過靜置之后會快速沉降,如果取樣之前沒有充分混勻,上層與下層懸液濃度存在明顯梯度,先后吸取的樣本濃度不一致。部分樣本內(nèi)存在細胞碎片、雜質(zhì)顆粒,碎片尺寸接近小型細胞時,容易被儀器誤判為完整細胞,拉高統(tǒng)計總數(shù)。針對這類問題,可以采用輕柔吹打結(jié)合濾網(wǎng)過濾的方式打散細胞團,取樣前充分混勻,單次測量完成后重新混勻樣本再進行復測。
染色體系的穩(wěn)定性會影響活細胞與死細胞區(qū)分結(jié)果。臺盼藍等染料依靠細胞膜完整性實現(xiàn)選擇性染色,染料出現(xiàn)結(jié)晶沉淀、存放時間過長,都會降低染色效果。染料與細胞懸液的混合比例、染色孵育時長需要保持穩(wěn)定,染色時間太短,受損細胞膜還未充分攝取染料;染色時間過長,染料會逐步滲透進入健康細胞,造成活率計算結(jié)果偏低。混合過程引入氣泡也會干擾成像識別,氣泡會遮擋視野內(nèi)的細胞,造成局部區(qū)域漏檢,測量數(shù)值出現(xiàn)隨機波動。
美國DeNovix細胞計數(shù)器檢測參數(shù)設(shè)置需要適配對應(yīng)細胞類型。設(shè)備內(nèi)置通用識別標準,適合常規(guī)腫瘤細胞系,當使用原代細胞、脂肪細胞等形態(tài)特殊的樣本時,默認參數(shù)會產(chǎn)生識別偏差。細胞直徑閾值、圓形度判定標準如果沒有調(diào)整,偏大或者形態(tài)不規(guī)則的細胞會被系統(tǒng)過濾,細小碎片又會被判定為有效細胞。成像對焦與曝光參數(shù)同樣關(guān)鍵,對焦模糊會造成細胞輪廓邊界不清,曝光強度不合適,無法清晰區(qū)分染色與未染色細胞,直接影響活率計算。
樣本加載操作細節(jié)同樣不可忽視。計數(shù)腔室表面殘留上一次樣本的細胞殘渣,會混入新樣本視野形成額外干擾。加載樣本體積需要符合設(shè)備要求,體積不足會形成不完整液層,體積過量容易產(chǎn)生擠壓形變。樣本滴入腔室后需要靜置一段時間,等待細胞自然沉降,細胞持續(xù)懸浮移動時拍攝圖像,會造成輪廓識別錯誤。
日常開展批量樣本檢測時,可以建立一套標準化操作流程。統(tǒng)一細胞消化、混勻、染色步驟,固定染色等待時長;根據(jù)細胞形態(tài)調(diào)整識別閾值,正式實驗前使用同一樣本進行多次平行測試;每次加載樣本前清潔光學檢測區(qū)域,規(guī)范加樣動作減少氣泡產(chǎn)生。通過標準化操作縮小隨機誤差,讓細胞濃度與活率數(shù)據(jù)具備穩(wěn)定參考價值。